細胞特性

1） 來源：肺癌

2） 形態：上皮細胞樣，多角形；貼壁生長

3） 含量：>1x106

4） 污染：支原體、細菌、酵母和真菌檢測為陰性

5） 規格：T25 瓶或者 1mL 凍存管包裝

運輸和保存：可選擇干冰運輸及發送復蘇存活細胞方式： （1）干冰運輸，收到后 立即轉入液氮或者-80 度冰箱凍存或直接復蘇；（2）存活細胞，收到后應繼續生 長，傳代達到細胞生長狀態良好時，再進行凍存。具體操作見細胞培養步驟。 收到細胞后請拍照，3 天內如果發現污染，請及時拍照與我們聯系。

 

細胞接收后的處理： 1） 收到細胞后，請檢查發貨培養瓶的狀況，若發現培養瓶破損、有液溢出及細 胞有污染，請拍照后及時聯系我們。 2） 在顯微鏡下確認細胞生長狀態時，最好在低倍鏡（4 或 5X 物鏡)下進行，能 準確判斷細胞的傳代密度。看細胞的形態請在 10X 和 20×物鏡下，同時給剛收 到的細胞拍照，（10×，20×）各 2-3 張以及培養瓶外觀照片一張留存，作為細 胞需要售后時提供收到細胞時細胞狀態的依據。 3）觀察好細胞狀態后， 75%酒精消毒瓶壁將T25瓶置于37℃培養箱放置約2-3h。 4） 貼壁細胞：在運輸過程中貼壁細胞會有脫落的現象，如發現貼壁細胞有脫落 或者脫落后抱團生長，可將 T25 瓶置于 37℃培養箱放置約 2-3h，然后抽出瓶中 的培養基和未貼壁細胞 1000rpm 離心 5 分鐘，棄去上清重懸后接種到加有按照 說明書細胞培養條件新配制的完全培養基的原培養瓶中（或新的培養瓶中）。 5） 懸浮細胞：T25 瓶置于 37℃培養箱放置約 2-3h，然后抽出瓶中的培養基和 細胞 1000rpm 離心 5 分鐘，棄去上清重懸后接種到新的培養瓶中（加入按照說 明書細胞培養條件新配制的完全培養基）。 6）備注：運輸用的培養基（灌液培養基）不能再用來培養細胞，請換用按照說 明書細胞培養條件新配制的完全培養基來培養細胞。 收到細胞后第一次傳代建 議 1：2 傳代 。

 

細胞用途：僅供科研使用。

 

本公司的細胞培養操作規程，供參考 一．培養基及培養凍存條件準備： 1）準備 F-12K 培養基；優質胎牛血清，10%；雙抗，1%。

2）培養條件： 氣相：空氣，95%；二氧化碳，5%。 溫度：37℃，培養箱濕度 為 70%-80%。 3）凍存液：90%血清，10%DMSO，現用現配。 二．細胞處理： 1） 復蘇細胞：將含有 1mL 細胞懸液的凍存管迅速放入 37℃水浴中（水面要低 于凍存管蓋部）搖晃解凍，移入事先準備好的含有 4mL 培養基的 15ml 離心 管中混合均勻。在 1000RPM 條件下離心 4 分鐘，棄去上清液，加入 1mL 培 養基后吹勻。然后將所有細胞懸液移入含有 5ml 培養基的培養瓶中培養過夜。 第二天換液并檢查細胞密度。 2） 細胞傳代：如果細胞密度達 80%-90%，即可進行傳代培養。 對于貼壁細胞，傳代可參考以下方法： 1. 棄去培養上清，用不含鈣、鎂離子的 PBS 潤洗細胞 1-2 次。 2. 加 2ml 消化液（0.25%Trypsin-0.53mMEDTA）于培養瓶中，置于 37℃培 養箱中消化 1-2 分鐘，然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況，若細胞大部 分變圓并脫落，迅速拿回操作臺，輕敲幾下培養瓶后加入 3ml 此細胞的 培養基終止消化。 3. 輕輕吹打后吸出，移入 15ml 離心管中，在 1000RPM 條件下離心 4 分鐘， 棄去上清液，加入 1mL 培養液后吹勻。 4. 收到細胞后首次傳代推薦將細胞懸液按 1： 2 的比例分到新的含 6ml 培養 基的新皿中或者瓶中，建議凍存一支備用，后續傳代根據實際情況按 1:2 到 1:5 的比例進行。 3）細胞凍存：待細胞生長狀態良好時，可進行細胞凍存。

 

下面 T25 瓶為類；

1，細胞凍存時，棄去培養基后，PBS 清洗一遍后加入 1ml 胰酶，細胞變圓 脫落后，加入 1ml 含血清的培養基終止消化，可使用血球計數板計數。

2，4min1000rpm 離心去掉上清。加 1ml 血清重懸細胞，根據細胞數量加入 血清和 DMSO，輕輕混勻，DMSO 終濃度為 10%，細胞密度不低于 1x10E6/ml， 每支凍存管凍存 1ml 細胞懸液，注意凍存管做好標識。

3，將凍存管置于程序降溫盒中，放入-80 度冰箱，至少 2 個小時以后轉入 液氮灌儲存。記錄凍存管位置以便下次拿取。

 

注意事項：

1. 收到細胞后，若發現干冰已揮發干凈、凍存管瓶蓋脫落、破損及細胞有污染， 請立即與我們聯系。

2. 所有動物細胞均視為有潛在的生物危害性，必須在二級生物安全臺內操作， 并請注意防護，所有廢液及接觸過此細胞的器皿需要滅菌后方能丟棄。